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常见问题
本试剂盒可用于从革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌中分离纯化总RNA。 通过溶菌酶消化细胞，结合独特的缓冲液系统，利用膜吸附原理，可以纯化到高质量的总RNA。纯化到的RNA无基因组污染，完整性好，稳定性高。纯化到的总RNA可直接用于后续分子实验操作，如RT-PCR、northern杂交等。
产品特点:
1）针对细菌独特配置，操作更简单、流程更优化，30分钟内完成RNA提取；
2）安全可靠，整个过程无需酚氯仿抽提；
3）收获量高，完整和稳定性好，可直接用于后续分子实验操作。
*使用提示:
为取得好的实验效果，请按照以下方法进行菌液制备：挑取新鲜单菌落接种至合适培养基中，过夜初摇12~16小时，按照1：50的比例接种初摇培养液至新鲜培养基中进行再次摇菌，至OD600等于0.6~1.0，吸取不超过3 mL菌液（< 5 x10＾8）进行RNA提取；
问题1：得率低
原因1：样本中RNA已经降解，建议采集样品后快速液氮冷冻并储存于-70℃，防止样本中RNA降解，或者使用新鲜的样本。
原因2：样本不新鲜或者样本过量导致裂解不充分，建议减少处理样本的加入量。
原因3：RNA wash Buffer 中未加入等比例乙醇，建议按照试剂盒说明书要求加入等比例的无水乙醇。
原因4：样本预处理不充分，建议请充分破碎样本
问题2：纯度差
原因1：蛋白质污染，建议可增加BufferRB再一次洗涤
原因2：盐类污染，建议增加 RNA wash Buffer 洗涤次数；如后端提取RNA有盐类污染，可加入2.5倍体积的乙醇和0.1M的NaCl（终浓度）来沉降RNA，-20℃孵育30min，4℃，10,000×g离心15min，用DEPCtreatedddH2O重悬RNA沉淀。
问题3：基因组污染
原因1：RT-PCR加入过量RNA，建议减少RT-PCR反应时，RNA加入过量，RNA加入量应控制在50-100ng。
原因2：样本富含DNA。减少样品初始使用量。
